4.1.3. Сельскохозяйственно-производственный кооператив рыбколхоз имени “К. И. Мирошниченко”
Применяемый на Кубани экологический способ разведения рыбца и шемаи базировался только на осенних мигрантах (с заготовкой производителей в октябре-ноябре), последующим длительным выдерживанием в глубоких лиманах (маточных водоемах) и использованием их для воспроизводства через 6–7 месяцев (май-июнь следующего года).
Применяемый на существующем АДРЗ комбинированный (заводской с элементами экологического) способ разведения ранее базировался только на весенних мигрантах, с отловом производителей на Нижнем Дону в феврале-марте, доставкой рыб на завод в апреле
и их освоением в мае-июне того же года.
Оба вышеуказанных способа разведения имеют как положительные, так и отрицательные стороны: у первого – потери икры за счет икрофагов, у второго – недоиспользование возможностей вида по рабочей плодовитости.
Учитывая сложившуюся ситуацию с запасами рыбца, возникла необходимость в разработке новой биотехнологии, основанной на результатах уже известных способов разведения, с привлечением в рыбоводный процесс как весенних, так и осенних производителей.
С целью создания управляемого процесса созревания было принято решение испытать гормоны сазаньего и лещевого гипофиза.
Биология размножения шемаи очень близка и сходна с биологией рыбца. Поэтому, достигнув определенных положительных результатов по рыбцу, были начаты эксперименты по получению зрелой икры у шемаи.
В основу новой технологии положена заготовка производителей на Нижнем Дону в разные сроки (осень, весна); доставка в зимовалы
близко расположенного прудового хозяйства; передержка их до апреля и широкое освоение разнокачественных производителей с использованием
инкубационной мощности и прудового фонда этого же рыбоводного предприятия. С 1994 г. экспериментальные работы по разработке биотехнологии разведения и подращивания шемаи в прудовых условиях
(единственные в России), а также новой заводской биотехнологии разведения рыбца были начаты на базе СПК «Рыбколхоз
им. К.И. Мирошниченко» группой научных сотрудников Азовского научно-исследовательского института рыбного хозяйства.
Материалы, полученные Г.И. Карпенко с коллегами, подтвердили возможность получения рыбоводно-продуктивной икры от половозрелых
особей рыбца и шемаи после длительного выдерживания их в водоемах прудового хозяйства.
Новая биотехнология включает в себя не только получение зрелой, рыбоводно-продуктивной икры от разнокачественных производителей
путем гормонального воздействия, но также и разработку интенсивной технологии подращивания рыбца и шемаи до жизнестойких стадий развития.
Разработка новой биотехнологии разведения рыбца начиналась со следующих вопросов: определение оптимальных доз гипофиза в зависимости от условий теплонакопления; кратность введения
гормона; время овуляции в зависимости от температуры; определение теста готовности самок к воздействию гормона.
Все вышеперечисленные вопросы изучали на различных популяциях рыбца, отличающихся, в основном, началом нерестового
хода в р. Дон. Как показал анализ полученных данных, несмотря на сокращение запасов рыбца динамика его нерестового хода
сохраняется. Остаются стабильными показатели по размерному и возрастному составу. Нерестовый ход донского рыбца начинается
с октября, но наиболее массовым он становится в феврале и марте, и завершается в апреле. По-видимому, в связи с такой растянутостью
нерестового хода у рыбца отмечается б?льшая вариабельность в степени зрелости гонад на один и тот же срок.
По состоянию зрелости гонад самки рыбца могут значительно
отличаться и в разные календарные годы. Так, например, в 1994 г. самки были более зрелые (7,3), в 1993 – менее зрелые (5,9), в 1996 г.
этот коэффициент составлял 6,4. Указанный коэффициент характеризует условия нагула и суммы теплонакопления в предшествующий сезон
и важен для определения начала рыбоводных работ.
У особей рыбца разных сроков заготовки, отличающихся в период
отлова в реке степенью зрелости гонад, с приближением нерестовых температур коэффициент зрелости почти одинаков у осенних и весенних
особей. Однако под воздействием гормона гипофиза, при одинаковой его дозе и почти одной и той же рабочей плодовитости, осенние самки
лучше отвечают на стимуляцию при температуре 15–16 оС, весенние – при 17–18 оС. Вышеуказанная закономерность явилась основой рекомендации последовательного использования производителей
разных сроков заготовки и более рационального применения производственных мощностей.
Производственная база СПК «Рыбколхоз им. К.И. Мирошниченко» включает зимовальные (по 0,8 га), преднерестовые (по 0,4 га), нерестовые (по 0,2 га) пруды (рис. 14), инкубационный цех, оснащенный необходимым оборудованием (аппараты конструкции П.С. Ющенко), лабораторию для наблюдения и корректировки гидрологического и гидрохимического режимов в прудах. Кроме того, имеются насосная станция, пруды – накопитель и отстойник для снабжения цеха чистой водой, а также собственный тоневой участок и рыболовецкие бригады.
Рисунок 14 – Нерестовые пруды СПК «Рыбколхоз им. К.И. Мирошниченко»
Отлов осенних мигрантов рыбца и шемаи начинали во время нерестового хода их из моря в реку Дон, ориентировочно – с первой декады октября до наступления ледостава, при температуре воды в реке ниже 12 оС (от 12 до 0 оС).
В зимне-весенний период – после распаления льда продолжали заготовку производителей рыбца, мигрирующего в р. Дон при температуре от 0 оС (шемаи – 3–4 оС) до 13–14 оС в феврале-марте (рис. 15).
Тоневой участок располагался рядом с прудовым хозяйством. Производителей рыбца и шемаи из улова выбирали руками, сразу выбраковывая рыб, имеющих повреждения, и отсаживали в помещенную
в воду корзину с крышкой из металлических прутьев, обтянутых делью с ячеей меньше 18 мм. Такая корзина может служить для кратковременного
содержания рыбы до пересадки ее в живорыбную автомашину или водак в случае транспортировки по воде. Благодаря близкому расположению зимовальных прудов и тоневого участка, доставка производителей
рыбца и шемаи осуществлялась моторной лодкой в молочных бидонах, емкостью около 40 л.
Рисунок 15 – Заготовка рыбца на тоневом участке
Проводимые в течение трех лет исследования уловов на контрольной
тоне «Оселедняя» позволили более точно определить время отлова,
т.е. начала и окончания заготовки производителей рыбца и шемаи в реке.
На рисунке 16 видно, что пик нерестового хода рыбца приходится
на февраль-март, а шемаи – на апрель-май. Несмотря на то, что
нерестовая миграция рыбца продолжается в апреле и мае, поздних
мигрантов для искусственного воспроизводства брать не рекомендуется.
В связи с тем, что естественный нерест рыбца начинается в третьей
декаде апреля, производителям необходимо время для выхода из
стрессовой ситуации, связанной с отловом. В противном случае стресс
может привести к резорбции половых продуктов. Так как биология рыбца
близка к шемае, заготовку шемаи проводили в те же сроки.
Рисунок 16 – Количество мерного и немерного рыбца (а) и шемаи (б), отмеченное в контрольных ловах на тоне «Оселедняя»
Облов зимовальных прудов с производителями рыбца и шемаи
проводили только при наступлении температуры воды 10–12 оС (рис. 17).
Производителей перевозили к инкубационному цеху, распределяли
по группам в зависимости от пола, степени готовности к нересту
и рассаживали в преднерестовики, садки и бассейны (ванны),
находящиеся в инкубцехе. В инкубцех попадали самые зрелые особи,
которых отбирали в результате постепенного многократного осмотра
имеющегося рыбоводного материала.
Рисунок 17 – Облов зимовальных прудов
Производителей рыбца, отобранных для инъекций, помещали
в отдельные ванны или бассейны с перегородками, чередуя отсеки с самками и отсеки с самцами, из расчета плотности посадки не более
90–100 экз./м3; при наличии проточности воды 9–10 л/мин.
Через сутки, необходимые для адаптации рыб, приступали
к проведению гипофизарной инъекции. Рыбоводные работы по инъецированию рыбца проводили последовательно: производителей
рыбца, заготовленных осенью – при среднесуточной температуре 15–16 (17) оС, заготовленных в зимне-весенний период – при 17–18 (19) оС.
Ориентиром начала работ по инъецированию шемаи считали наступление текучего состояния у самцов.
Производителей рыбца и шемаи инъецировали дважды: предварительная инъекция – 1/10 часть от общей дозы гипофиза на 1 кг
массы самок; через сутки разрешающая – остаток от общей дозы, которая колеблется для рыбца от 7 до 9 мг/кг массы тела рыб, для шемаи – 6–7 мг/кг в зависимости от температуры воды. При высокой
температуре воды (22-23 оС) и, в зависимости от зрелости рыб, для шемаи возможна и одноразовая инъекция общей дозой 6 мг/кг.
В сухой таз (ковшик или миску) емкостью 1–2 л отцеживали икру не более чем от 10–15 зрелых самок в течение 30–45 минут у рыбца,
30–35 минут – у шемаи. Половые продукты самцов отцеживали в сухую посуду (стеклянные бюксы или фаянсовые чашечки с крышками).
Количество спермы брали из расчета 10 см3 на 1 кг икры. Сцеженные икру и сперму тщательно охраняли от попадания водяных брызг.
Оплодотворение осуществляли мокрым способом, одновременно приливая икру и сперму в чашку с водой, постоянно осторожно помешивая
все содержимое пером в течение 2–3 минут. Через 3–5 мин после осеменения производили полную смену воды, затем во избежание склеиваемости икру отмывали, осторожно помешивая пером, постепенно
доливая воду до соотношения: четыре объема воды к одному объему икры. Последующую полную смену воды проводили через 10–15 минут,
всего не менее 4–5 раз для рыбца и 7–9 раз – для шемаи. Обесклеивание икры рыбца производили около часа, но не менее 45 мин., шемаи –
1,0–1,5 часа. Смену воды прекращали, когда приклеивающихся ко дну чашки икринок не наблюдалось.
Инкубацию икры, как рыбца, так и шемаи, проводили в аппаратах конструкции П.С. Ющенко. Через 10–12 часов после осеменения
(допускается одни сутки) на поздних стадиях гаструлы или на стадиях органогенеза (формирования зародыша) определяли процент
оплодотворения икры.
В период инкубации и выдерживания эмбрионов рыбца и шемаи в аппаратах проводили круглосуточные наблюдения за бесперебойной
подачей воды в аппараты, регулированием ее тока, содержанием растворенного кислорода и проводили регулярную чистку аппаратов.
Эмбрионы рыбца выклевываются слаборазвитыми, долгое время лежат на боку, не реагируя даже на прикосновение. Находясь в аппаратах, они образуют многослойные скопления в углах (рис. 18) и других местах, защищенных от попадания солнечных лучей (отрицательный фототаксис).
Рисунок 18 – Скопления личинок рыбца в углах аппарата
Выклюнувшиеся эмбрионы шемаи, большей частью, лежат рассеянно на дне, изредка, через 3–5 мин. переворачиваются; кое-где образуют небольшие скопления. Отчетливой реакции по отношению к свету, на этой стадии, у эмбрионов шемаи не обнаружено. Светобоязнь проявляется на более позднем этапе. Эмбрионы шемаи проявляют значительно б?льшую подвижность, чем эмбрионы рыбца, на соответствующей стадии развития. Время от времени они быстро всплывают в толщу воды, медленно опускаются головой вниз и, ткнувшись головой в дно, ложатся.
Общая продолжительность эмбрионального развития рыбца (первый-девятый) при различном температурном диапазоне длится от 16 до 12 суток при температуре воды от 14,8 до 20,1 оС, соответственно.
Продолжительность эмбрионального развития у шемаи – от 12 до 9 суток при температуре воды 17,8–24,5 оС, соответственно.
Предличинок рыбца выдерживали в аппаратах от выклева до момента перехода их на смешанное питание – желтком и внешней пищей, что, как правило, совпадает со временем перехода рыбца к пелагическому образу жизни, для которого характерно образование передней камеры плавательного пузыря при почти полном рассасывании желточного мешка. Способность рыбца заглатывать мельчайшие организмы извне свидетельствует о его переходе на личиночное развитие (первый личиночный этап) (рис. 19).
Рисунок 19 – Личинки рыбца перед посадкой в пруд
Девятый этап у шемаи также последний эмбриональный – переходный к личиночному периоду жизни. В течение этого этапа становятся подвижными глаза, нижняя челюсть, жаберные крышки и грудные плавники. Начинают функционировать жабры, но наряду с ними еще функционируют эмбриональные органы дыхания – сосудистые сети нижней хвостовой вены в анальном и сегментальные сосуды в спинном отделах общей непарной плавниковой складки. В крови появляется гемоглобин. Эмбрионы перестают бояться света, но продолжают приклеиваться. К концу этапа плавательный пузырь наполняется воздухом.
Значительный интерес представляет сравнение эмбрионов шемаи и рыбца на сходных стадиях развития после наполнения плавательного пузыря воздухом; поэтому полезно иметь представление хотя бы о самых бросающихся в глаза различиях, которые могут служить определительными признаками.
У шемаи (рис. 20 а, б, в) туловище относительно и абсолютно короче, хвост длиннее, более низкое тело, более низкая, слегка расширяющаяся вперед голова с очень определенным расположением меланофоров на теменной поверхности; впереди, посередине брюшка, единственный продольный ряд крупных меланофоров.
Рисунок 20 – Yмбрионы шемаи и рыбца вскоре после наполнения плавательного пузыря воздухом (температура воды 17,8–18,2 оС)
а – эмбрион шемаи, длина 8,2 мм, возраст 10 1/
2
суток; б – голова эмбриона шемаи сверху; в – голова и передняя часть туловища эмбриона шемаи снизу; г – эмбрион рыбца, длина 8,4 мм, возраст 11 суток; д – голова эмбриона рыбца сверху; е – голова и передняя часть туловища эмбриона рыбца снизу
У рыбца (рис. 20 г, д, е) тело более высокое, желточный мешок спереди шире, туловище длиннее, хвост короче, более высокая голова, заметно сужающаяся вперед, ее теменная поверхность пигментирована
обильнее, чем у шемаи. На брюшной поверхности спереди мелкие, паукообразные меланофоры составляют характерный рисунок из трех
сходящихся впереди рядов – более короткого центрального, и двух косо расположенных боковых.
Пересадку личинок, как рыбца, так и шемаи, из аппаратов в выростные пруды производили после того, как они всей массой поднимались
в толщу воды и переходили на экзогенное питание.
При разработке новой биотехнологии разведения молоди рыбца
и шемаи в прудах СПК «Рыбколхоз им. К.И. Мирошниченко» на протяжении 10 лет проводились исследования различных методов повышения
эффективности выращивания за счет внесения удобрений, кормления рыб, увеличения плотности посадки личинок, применения поликультуры рыбца с шемаей в оптимальном соотношении и двукратного зарыбления.
Результаты работ (Карпенко и др., 2004) показали, что при проведении интенсификационных мероприятий, необходимых для
создания и поддержания естественной кормовой базы в прудах, приходится учитывать множество косвенных факторов:
– сроки и нормы внесения удобрений; – выбор удобрений с учетом сроков эксплуатации используемых
водоемов, обуславливающих накопление органического вещества на дне пруда, закрепления в нем основных биогенных элементов, таких
как азот, фосфор, калий, сера, ионно-солевой состав воды и донных отложений;
– усложнение схемы внесения минеральных и органических удобрений;
– оптимальная плотность посадки рыб.
Важнейшим элементом эксплуатации прудов при подращивании
личинок рыбца является качество воды водоисточника рыбоводного
хозяйства. Она должна отвечать ОСТ 15.372-87, указанному в таблице 2.
Таблица 2 Качество воды, используемой в технологическом процессе при подращивании рыбца
Наименование показателей Нормативные значения
Температура, оС
Температура поступающей воды не должна иметь перепад более чем 5 оС относительно воды в прудах. Максимальные значения не должны превышать 28 оС
Запахи, привкусы
Вода не должна иметь посторонних запахов, привкусов Цветность (градусы) до 50 Прозрачность, м не менее 0,75–1,0 Взвешенные вещества, г/м3 до 25,0 Водородный показатель, (рН) 6,5–8,5 Кислород растворенный, г/м3 не ниже 5,0 Диоксид углерода растворенный, г/м3 25,0 Сероводород растворенный, г/м3 отсутствие Аммиак растворенный, г/м3 0,05 Окисляемость перманганатная, гО/м3 до 15,0 Окисляемость бихроматная, гО/м3 до 50,0 БПК
5
, гО
2
/м3 до 3,0 БПК
полн
, гО
2
/м3 до 4,5 Аммоний-ион, г N/м3 1,0 Нитрит-ион, г N/м3 0,02 Нитрат-ион, г N/м3 2,0 Фосфат-ион, гР/м3 0,5 Железо общее, г/м3 1,8 Железо закисное, г/м3 0,2 Общая численность микроорганизмов, млн кл./мл
до 3,0
Численность сапрофитов, млн кл./мл до 5,0
В период подращивания были отработаны допустимые значения
качества воды в соответствии с технологическими нормами (табл. 3).
Таблица 3 Качество воды в период подращивания личинок рыбца и шемаи
Наименование показателей
Технологическая норма
Допустимые значения
Растворенный кислород, г/м3 6,0–8,0
4,9 понижение к утру не меньше 2,0
Растворенный диоксид кислорода, г/м3 10,0 30,0
Растворенный сероводород, г/м3 отсутствие отсутствие
Растворенный аммиак, г/м3 0,01–0,07 0,1
БПК
4
, гО
2
/м3 1,0–4,0 5,0
Перманганатная окисляемость, гО/м3 10,0–15,0 30,0
Бихроматная окисляемость, гО/м3 35–70 100
Фосфат-ион, гР/м3 0,1 0,5
Аммоний-ион, г N/м3 0,5 1,0
Нитрат-ион, г N/м3 0,2–1,0 3,0
Нитрит-ион, г N/м3 0,08 0,2
Контроль качества воды в прудах, при выращивании молоди рыбца
и шемаи осуществляли сотрудники производственной лаборатории СПК
«Рыбколхоз им. К.И. Мирошниченко» (рис. 21).
Проведение полного биологического анализа производителей рыбца
и шемаи, определение коэффициентов упитанности и зрелости гонад,
расчет гипофиза для инъецирования, процент оплодотворения икры
и развивающихся эмбрионов, определение стадий развития эмбрионов
и личинок рыбца и шемаи и другие исследования осуществляла Г.И. Карпенко с коллегами (рис. 22).
Рисунок 22 – Г.И. Карпенко определяет вариационные ряды выпускаемой молоди
Экспериментальные пруды (площадью 0,2 га) представляют собой небольшие спускные водоемы (рис. 23). Кратковременность (2,5–3,0 месяца в год) использования привела к созданию в них более благоприятных условий, чем в прудах, находящихся под водой длительные сроки. Однако за время эксплуатации накопился определенный слой илистых отложений (Шевцова, 2002). Азот и фосфор были представлены в прудах, главным образом, органическими соединениями. Такие
Рисунок 21 – Производственная лаборатория СПК «Рыбколхоз им. Мирошниченко»
формы основных биогенов становятся доступными фитопланктону только в результате деятельности микроорганизмов. При проведении агромелиоративных и интенсификационных мероприятий с целью
улучшения обеспеченности рыб естественным кормом, учитывали его биомассу, продукцию и режим изъятия.
Рисунок 23 – Выростные пруды
По достижению нормативной навески – 0,3 г, молодь рыбца и шемаи выпускали из прудов в реку Дон по сбросному каналу.
Подсчет выпускаемой молоди рыбца и шемаи проводили сплошным методом учета (рис. 24), просчитывая эталон через каждые 2 часа.
Рисунок 24 – Сплошной метод учета при выпуске молоди
В ходе многолетних исследований были тщательно проанализированы имеющиеся технологии разведения рыбца и шемаи, все их плюсы и минусы. С учетом анализа, были начаты работы по созданию интенсивной биотехнологии разведения рыбца, а впоследствии – шемаи, применение которой возможно как в специализированных рыбопитомниках, так и в условиях карповых хозяйств.
Для сохранения ценного (донского рыбца) и краснокнижного (азово-черноморской шемаи) видов на популяционном уровне было крайне необходимо расширять их воспроизводство по новой биотехнологии с применением интенсивного подращивания.
Во многих хозяйствах имелись оснащенные инкубцеха. В связи с сокращением объемов товарного рыбоводства часть прудового фонда этих хозяйств не была востребована. Рациональное использование имеющихся мощностей инкубцехов и прудов позволило бы получать дополнительную продукцию в виде молоди проходных рыб, в частности – рыбца и шемаи.
Экспериментальные разработки по разведению и подращиванию рыбца в условиях прудовых хозяйств были начаты с 1992 г. (Битехтина, Карпенко, 1996; Битехтина, Карпенко, Переверзева, 1998; Битехтина, Карпенко, Переверзева, 2000; Шевцова, 2002). В новую технологию предполагалось включить материалы по всем звеньям биотехнологического цикла размножения, подращивания и выпуска в естественные водоемы (заготовка разнокачественных производителей, выдерживание рыб в прудовых хозяйствах, получение икры с применением гормональных инъекций; инкубация икры и выдерживание эмбрионов, подращивание мальков с использованием интенсификационных мероприятий, интродукция рыбца в водоемы различного типа).
В связи с разработкой нового метода разведения рыбца и шемаи с помощью гипофизарных инъекций необходимо было уточнить последовательность освоения производителей в воспроизводственном процессе.
